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當(dāng)前位置:首頁(yè)產(chǎn)品中心科研試劑盒PCR試劑盒鴨瘟病毒(DPV)核酸檢測(cè)試劑盒(熒光PCR法)
鴨瘟病毒(DPV)核酸檢測(cè)試劑盒(熒光PCR法)

產(chǎn)品簡(jiǎn)介

鴨瘟病毒(DPV)核酸檢測(cè)試劑盒(熒光PCR法)適用于檢測(cè)病鴨血液、口腔偽膜及潰瘍處粘液、肝、脾、腎等組織樣品 等樣本中的鴨瘟病毒,用于鴨瘟病毒感染的輔助診斷。

產(chǎn)品型號(hào):
更新時(shí)間:2025-06-17
廠商性質(zhì):生產(chǎn)廠家
訪問(wèn)量:1264
詳細(xì)介紹在線留言

【產(chǎn)品名稱(chēng)】

通用名稱(chēng):鴨瘟病毒(DPV)核酸檢測(cè)試劑盒(熒光PCR法)

Name :Duck Plague Virus Detection Kit (Real-Time PCR Method)

【包裝規(guī)格】50T/盒

【預(yù)期用途】

鴨瘟,又稱(chēng)鴨病毒性腸炎,是由皰疹病毒科鴨瘟病毒(Duck Plague Virus, DPV) 引起的一種急性(有時(shí)呈慢性)鴨、鵝和天鵝接觸性傳染病。其特征為體溫升高,兩腿麻痹,下痢,流淚和部分病鴨頭頸腫大。食道粘膜有小出血點(diǎn),并有灰黃色假膜覆蓋或潰瘍,泄殖腔粘膜充血出血水腫和假膜覆蓋。肝有不規(guī)則大小不等的出血點(diǎn)和壞死灶[1]。本病傳播迅速,發(fā)病率和死亡率高,嚴(yán)重威脅養(yǎng)鴨業(yè)發(fā)展。

本試劑盒適用于檢測(cè)病鴨血液、口腔偽膜及潰瘍處粘液、肝、脾、腎等組織樣品   等樣本中的鴨瘟病毒,用于鴨瘟病毒感染的輔助診斷。

【檢驗(yàn)原理】

鴨瘟病毒(DPV)核酸檢測(cè)試劑盒(熒光PCR法)對(duì)鴨瘟病毒基因組保守區(qū)設(shè)計(jì)特異性引物和探針[1-3],用熒光 PCR 技術(shù)對(duì)鴨瘟病毒的核酸進(jìn)行體外擴(kuò)增檢測(cè),用于臨床上對(duì)可疑感染者的病原學(xué)診斷。

【試劑組成】

名         稱(chēng)

規(guī)         格

酶液

50μL×1 管

DPV 反應(yīng)液

500μL×2 管

DPV 陽(yáng)性質(zhì)控品

50μL ×1 管

陰性質(zhì)控品

250μL ×1 管







注:

1)  不同批號(hào)試劑不能混用。

2)  試劑盒內(nèi)各試劑組份足夠包裝規(guī)格所標(biāo)示的檢測(cè)次數(shù)。

【儲(chǔ)存條件及有效期】

-20℃±5℃,避光保存、運(yùn)輸、反復(fù)凍融次數(shù)不超過(guò) 5 次,有效期 12 個(gè)月。

【適用儀器】

ABI 、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列

熒光定量 PCR 檢測(cè)儀。

【標(biāo)本采集】

在發(fā)病早期,無(wú)菌采集病鴨血液或刮取口腔偽膜及潰瘍處粘液;在動(dòng)物死亡后,

無(wú)菌采取肝、脾、腎等組織樣品

【保存和運(yùn)輸】

上述標(biāo)本短期內(nèi)可保存于-20℃,長(zhǎng)期保存可置-70℃,但不能超過(guò) 6 個(gè)月,標(biāo)本

運(yùn)送應(yīng)采用 2~8℃冰袋運(yùn)輸,嚴(yán)禁反復(fù)凍融。

【使用方法】

1.  樣品處理(樣本處理區(qū))

1.1  樣本前處理

組織樣品:每份組織分別從 3 個(gè)不同的位置稱(chēng)取樣品約 1g,手術(shù)/剪剪碎混勻后取0.5g 于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理鹽水后繼續(xù)研磨,待勻漿后轉(zhuǎn)至 1.5mL 滅菌離心管中,8000rpm 離心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中;粘液直接取 100μL 提取

1.2 DNA 提取

推薦采用公司生產(chǎn)的 DNA/提取試劑盒(離心柱提取

法),請(qǐng)按照試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行操作。

2.  試劑配制(試劑準(zhǔn)備區(qū))

根據(jù)待檢測(cè)樣本總數(shù),設(shè)所需要的 PCR 反應(yīng)管管數(shù)為N(N=樣本數(shù)+1 管陰性對(duì)照+1 管陽(yáng)性對(duì)照;樣品每滿(mǎn) 7 份,多配制 1 份),每測(cè)試反應(yīng)體系配制如下表:

試劑

DPV   反應(yīng)液

酶液

用量(樣本數(shù)為   N)

20μL

1μL

將混合好的測(cè)試反應(yīng)液分裝到 PCR 反應(yīng)管中,21uL/管。

3.  加樣(樣本處理區(qū))

將步驟 1 提取的 DNA、陽(yáng)性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品各取 4μL,分別加入相應(yīng)的反應(yīng)管中,蓋好管蓋,混勻,短暫離心。

4.  PCR 擴(kuò)增(核酸擴(kuò)增區(qū))

4.1 將待檢測(cè)反應(yīng)管置于熒光定量 PCR 儀反應(yīng)槽內(nèi);

 

4.2 設(shè)置好通道、樣品信息,反應(yīng)體系設(shè)置為 25μL;

熒光通道選擇: 檢測(cè)通道(Reporter Dye)FAM, 淬滅通道(Quencher Dye) NONE,ABI 系列儀器請(qǐng)勿選擇 ROX 參比熒光,選擇 None 即可。

4.3 推薦循環(huán)參數(shù)設(shè)置:

步驟

循環(huán)數(shù)

溫度

時(shí)間

收集熒光信號(hào)

1

1   cycle

95℃

10min

2

40 cycles

94℃

15sec

55℃

30sec

5.  結(jié)果分析判定

5.1  結(jié)果分析條件設(shè)定

設(shè)置 Baseline 和 Threshold:一般直接按機(jī)器自動(dòng)分析的結(jié)果分析,當(dāng)曲線出現(xiàn)整體傾斜時(shí),根據(jù)分析后圖像調(diào)節(jié)Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范圍內(nèi)調(diào)節(jié))、stop 值(一般可在 5~20 范圍內(nèi)調(diào)節(jié)),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖動(dòng)閾值線至高于陰性對(duì)照),重新分析結(jié)果。

5.2  結(jié)果判斷

陽(yáng)性:檢測(cè)通道 Ct 值≤35,且曲線有明顯的指數(shù)增長(zhǎng)曲線;

可疑:檢測(cè)通道 35<Ct 值≤38,建議重復(fù)檢測(cè),如果檢測(cè)通道仍為 35<Ct 值≤38, 且曲線有明顯的增長(zhǎng)曲線,判定為陽(yáng)性,否則為陰性;

陰性:樣本檢測(cè)結(jié)果 Ct 值>38 或無(wú) Ct 值。

6.  質(zhì)控標(biāo)準(zhǔn)

陰性質(zhì)控品:Ct>38 或無(wú) Ct 值顯示;

陽(yáng)性質(zhì)控品:擴(kuò)增曲線有明顯指數(shù)生長(zhǎng)期,且 Ct 值≤32; 以上條件應(yīng)同時(shí)滿(mǎn)足,否則實(shí)驗(yàn)視為無(wú)效。

7.  檢測(cè)方法的局限性

? 樣本檢測(cè)結(jié)果與樣本收集、處理、運(yùn)送以及保存質(zhì)量有關(guān);

? 樣本提取過(guò)程中沒(méi)有控制好交叉污染,會(huì)出現(xiàn)假陽(yáng)性結(jié)果;

? 陽(yáng)性對(duì)照、擴(kuò)增產(chǎn)物泄漏,會(huì)導(dǎo)致假陽(yáng)性結(jié)果;

? 病原體在流行過(guò)程中基因突變、重組,會(huì)導(dǎo)致假陰性結(jié)果;

? 不同的提取方法存在提取效率差異,會(huì)導(dǎo)致假陰性結(jié)果;

? 試劑運(yùn)輸,保存不當(dāng)或試劑配制不準(zhǔn)確引起的試劑檢測(cè)效能下降,出現(xiàn)假陰性或定   量檢測(cè)不準(zhǔn)確的結(jié)果;

? 本檢測(cè)結(jié)果僅供參考,如須確診請(qǐng)結(jié)合臨床癥狀以及其他檢測(cè)手段。

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